本期《袁來如此》為系列文章《大分子生物分析概論》的第十三篇，旨在根據(jù)已發(fā)表的文獻資料，對評估藥物臨床前PK/PD時，開發(fā)和選擇LBA方法的策略作初步介紹。
由于內(nèi)容篇幅較長，本文將采取上下篇形式進行推送，敬請垂注！《袁來如此》專欄系廣州博濟醫(yī)藥微信公眾號打造的科普學術專欄，內(nèi)容均為博濟醫(yī)藥子公司深圳博瑞副總經(jīng)理袁智博士原創(chuàng)。
1.導論
藥物發(fā)現(xiàn)是一個快速的transformative的過程，其包括靶標識別、靶標驗證、先導藥物的識別和優(yōu)化。隨著項目推進經(jīng)過這些階段，對生物分析的需求也在相應地改變。開發(fā)合適的生物分析方法可以提供藥代動力學和藥效動力學（PK/PD）的寶貴數(shù)據(jù)，以支持在新藥研發(fā)項目不同階段中關鍵的藥效和安全性研究，從而為項目的進展奠定堅實的基礎。在新藥早期的發(fā)現(xiàn)階段，會同時考慮不同藥物模式（drug modalities）的多個分子。一般有多種模式可供選擇，取決于靶標及其位置，例如，傳統(tǒng)的小分子、多肽、單克隆抗體、抗體-藥物偶聯(lián)物、納米抗體、融合蛋白藥物、雙特異性生物藥和寡核苷酸。在生物技術產(chǎn)業(yè)中，藥物的快速發(fā)現(xiàn)以及快速開發(fā)正推動著生物分析領域的發(fā)展和演進。這種演進的主要內(nèi)容是，縮短分析運行時間，實施multiplex分析，提高靈敏度，降低樣品體積的消耗，實現(xiàn)分析測試的自動化。
本文關注的重點是臨床前蛋白藥物生物分析方法的開發(fā)策略，即LBA分析平臺的選擇和方法開發(fā)中的關鍵注意事項。本系列之前的文章，基本是關注用于臨床樣本分析的LBA方法。為了簡單起見，在此文中僅評估用于檢測蛋白藥物的sandwich format的LBA，而蛋白藥物在大多數(shù)情況下，意味著單克隆抗體。雖然相關技術有多方面的進步，本文將重點關注已經(jīng)商業(yè)化和在生物分析行業(yè)十分流行的技術。文末的參考可以引導讀者非常詳細地了解相關內(nèi)容。
目前最流行的3種技術是ELISA、電化學發(fā)光（ECL、MSD、NJ、USA）和Gyrolab®（Gyros Protein Technologies、Uppsala、Sweden）。 同時，本文會簡要地涵蓋以下幾項不經(jīng)常使用但具有超高靈敏度的技術：如基于Single Molecule Array平臺（單分子陣列，Simoa™），單分子計數(shù)[SMC™]的Erenna® 平臺（Singulex Inc、CA、USA），免疫聚合酶鏈反應平臺（immuno-polymerase chain reaction、immuno-PCR、 Imperacer®、Chimera Biotec GmbH、Dortmund、Germany）。另外，還會簡要介紹multiplexing的Luminex平臺（Luminex xMAPR、Luminex Corporation、TX、USA）。在藥物發(fā)現(xiàn)階段，分析方法開發(fā)是生物分析的主要內(nèi)容之一，同時，應當特別考慮評估耐受性（tolerance）和分子完整性（molecular integrity）。
2.臨床前LBA方法的關鍵參數(shù)
用于藥物發(fā)現(xiàn)階段的生物分析方法有5個重要參數(shù)：樣品體積要求，定量的動態(tài)范圍，測試運行時間，靈敏度和自動化程度。本文將簡要地評估這些參數(shù)，并介紹這些參數(shù)在選擇檢測平臺時發(fā)揮的重要作用。
1) 樣本體積消耗
從小鼠身上單次采集的血清或血漿樣本的體積約為50ml。隨著在動物研究中嘗試實施3R（替換replacement，減少reduction 和細化refinement ），生物分析業(yè)界正在探索多種微體積采樣方法，而這將進一步大幅度地減少樣本體積。另外，在分析小鼠腦脊液等基質(zhì)的樣本時，只有2-5ml的體積可用?？紤]到有可能意外損失樣本，故從動物獲得的樣本體積應足以分析樣本至少兩次。因此，應當首選能夠使用低樣本體積的分析技術和平臺。
2) 定量動態(tài)范圍
能夠在寬廣的動態(tài)范圍內(nèi)，至少包含3-4個數(shù)量級，進行定量分析是極其有益的。對于PK分析，這允許較高的最小稀釋要求（minimum required dilution，MRD），以盡量減少樣本基質(zhì)效應，同時為低劑量給藥的樣本提供所需的定量靈敏度。同樣，對于PD，它允許在更寬廣的范圍內(nèi)測試平行性（parallelism），從而允許對含有高濃度生物標志物的樣品進行大幅度的稀釋。對于生物標志物測量，稀釋還有助于最大限度地減少樣本和基于緩沖液的標準曲線（替代基質(zhì)）之間的基質(zhì)差異，從而更精確地生成定量數(shù)據(jù)。
3) 分析運行時間
分析運行時間是實施PK/PD樣本分析所需時間，假定使用之前已為該應用開發(fā)分析方法，這也意味著假定試劑已標記，緩沖液已制備，并且相關儀器也已準備就緒。在non-GLP臨床前生物分析實驗室中，時間是至關重要的；在大多數(shù)情況下，最終目標是提供可靠，且可以重現(xiàn)的數(shù)據(jù)，同時保持較短的分析運行時間。這就提高了實驗室的效率，并允許該部門同時支持多個項目。分析96樣本微孔板的運行時間可以在1-5小時的范圍之間，具體取決于采用的分析技術（對于某些分析技術，有額外的隔夜捕獲步驟overnight capture step）。
4) 靈敏度
大多數(shù)傳統(tǒng)的單克隆抗體的PK定量LLOQ在幾個ng/ml范圍。一些高效力藥物分子（需要低劑量）和低豐度（或下調(diào)了的）的生物標志物可能需要更高的靈敏度。應當依據(jù)個案的情況為這些應用選擇相應的分析平臺。此外，高靈敏度的分析方法是高度依賴所使用的試劑，因此獲得高特異性和高親和力的試劑可以大大提高定量的靈敏度。提升分析靈敏度也同時降低了對樣本體積的要求，見1）。
5) 自動化
自動化平臺可縮短分析人員操作的時間，提高生物分析部門的效率。在臨床前藥物開發(fā)的環(huán)境中，分析平臺的完全自動化，在需要開發(fā)分析方法且進行常規(guī)樣本分析的情況下是非常有益的。同時，對于方法開發(fā)，優(yōu)化和因基質(zhì)或物種變化而進行的方法認證，需要能夠修改自動化平臺上的檢測方法的靈活性。
除了分析測試自動化之外，還可以自動化地制備標準品（standards）和質(zhì)量控制樣品（QCs），從而節(jié)省時間，降低珍貴參照（比）物料（reference material）的使用和成本，并減少手動移液產(chǎn)生的誤差。一些分析測試平臺，如Gyrolab，允許檢測的全自動化，而Hamilton和HPD300這樣的平臺，則可以允許自動化移液體，或制備標準品和QCs。超高靈敏度的Simoa™平臺也支持自動化地樣本檢測。
3.臨床前LBA免疫測試平臺
目前，有多種LBA測試平臺在新藥開發(fā)中得到應用。表1列出了若干LBA測試平臺及其比較。本文將進一步介紹其中幾種在生物分析行業(yè)中應用比較廣泛的平臺。由于為臨床前研究開發(fā)分析方法所選擇的LBA平臺，很可能會繼續(xù)在臨床研究中繼續(xù)使用，因此，選擇合適的測試平臺，將會是影響深遠的一個重大決定。
表1. 若干LBA測試平臺相關特征的比較
備注：上表中的方法未全部在文中詳細介紹。
近年來，一系列immunoassay的新技術，特別是基于微（磁）珠（beads，magnetic，etc.）的技術，從測試格式的物理學/物理化學層次，待測物的捕獲，檢測信號的收集/放大，數(shù)據(jù)處理等方面，實現(xiàn)了顯著改善，并取得了相當?shù)纳虡I(yè)性成功，雖然這些新方法在化學和生物學層次，仍然是基于抗體-抗原的結(jié)合作用以及基本的夾心式immunoassay。本文選擇若干得到廣泛商業(yè)應用的測試平臺，及其在臨床前生物分析方法開發(fā)的應用作初步介紹，希望起到拋磚引玉的目的，引發(fā)更多關于新的分析測試技術的開發(fā)和應用的相關討論、交流和研究。
ELISA平臺
ELISA是生物制藥行業(yè)內(nèi)外使用最廣泛的配體結(jié)合式（LBA）檢測平臺。ELISA的測試格式包括直接式、間接式和夾心式；ELISA經(jīng)常用作與開發(fā)中的新分析平臺進行比較的基礎；在96孔板上，通常對樣本進行復孔（duplicate）測定，手動或半自動運行。通常使用比色法的檢測試劑，但有時也使用其他檢測試劑，如發(fā)光（luminescence）和熒光（fluorescence）。通常，對ELISA方法，需要監(jiān)測試劑，如抗體（antibodies）、配體（ligands）、緩沖液（buffers）以及批次的變化。
幾十年來，傳統(tǒng)的ELISA一直是蛋白質(zhì)定量分析最常用的技術，因此也是最可靠的技術之一。即使在今天，大多數(shù)生物標志物的商業(yè)檢測試劑盒都是基于ELISA的。多數(shù)新分析技術都與作為金標準的ELISA比較。但是，這種分析技術也有缺點，例如，測試運行時間約長為 4-5 小時，樣品體積消耗大（測定體積為100 ml），靈敏度低與LLOQ在大多數(shù)情況下接近低-中ng/ml，以及狹窄定量動態(tài)范圍（2-3 數(shù)量級）。這項技術對于某些臨床前生物分析的應用仍然很有吸引力，比如血清單克隆抗體的PK。該平臺還提供了在方法開發(fā)早期階段評估測試方法不同部分的靈活性。表2列出了不同檢測平臺的性能，以一個mAb藥物為例。
表2. 與ELISA比色法檢測相比較，一個mAb在若干檢測平臺上LBA方法參數(shù)的比較
備注：上表中的方法未全部在文中詳細介紹。
電化學發(fā)光(Electrochemiluminescence，MSD)平臺
MSD平臺是一種基于微孔板的測試格式，它利用電化學發(fā)光（ECL）信號進行檢測。在這個平臺上，免疫測試格式類似于用于藥物定量和target sample measurements的典型ELISA格式，但預計靈敏度會因使用化學發(fā)光而增加。MSD平臺似乎主要在檢測信號的產(chǎn)生和收集上，相對于ELISA有顯著改善：MSD采用SULFO-TAG（三聯(lián)吡啶釕）是一種發(fā)光底物，其分子量約為1000Da（大約是HRP的1/40），因此空間位阻小，易于標記抗體，且不易妨礙其與待測物或其它抗體的結(jié)合。SULFO-TAG在陽極表面失去電子，發(fā)生氧化，在三丙胺陽離子自由基的催化及三角形脈沖電壓激發(fā)下，可產(chǎn)生高效、穩(wěn)定、連續(xù)的電化學發(fā)光信號，使得檢測信號增強并穩(wěn)定（見圖1）。
圖1. MSD的電化學發(fā)光產(chǎn)生的檢測信號
MSD的電化學發(fā)光技術在生物分析行業(yè)廣受歡迎。它保持了ELISA格式的優(yōu)點，如方法開發(fā)的靈活性，另外在其它領域也非常出色，如較小的樣品體積要求（測定體積為25–30 ml），更高的靈敏度（低-中pg/ml）和寬泛的動態(tài)范圍（4-5個數(shù)量級）。當以均相的測試格式運行時，此平臺可能受到鉤效應（hook effect）的影響。鉤效應起源于不合適的抗體-抗原濃度比例，但是可以減輕甚至消除的。此外，試劑和微孔板容易有批次間的變化，因此，強烈建議在批次之間進行交叉比較。
MSD微孔板的孔底為石墨底，捕獲抗體包被載量可提升10-50倍，檢測范圍比ELISA擴展了10-100倍，定量動態(tài)范圍高達5-6個數(shù)量級，靈敏度可提升10-1000倍（fg/ml-pg/ml級別）。根據(jù)對血清免疫學中的“帶現(xiàn)象”的理解，可推測：包被抗體載量可以根據(jù)檢測靈敏度的需要進行調(diào)整，以避免鉤效應（hook effect）。分析運行時間接近約3-4小時，但考慮到該平臺提供的其它優(yōu)勢，測試時間可被視為一個合理的折中。該平臺允許同時運行多個96孔板，因此在分析數(shù)百個樣品時，測試一個或多個96孔板也只需要基本相同的時間，這一點可能非常有利。此平臺不是自動化的，因為它需要分析人員參與每個步驟。此外，該平臺還提供與實驗室信息管理系統(tǒng)（LIMS）的集成和US FDA 21 CFR part 11的合規(guī)性，允許分析方法結(jié)果容易地轉(zhuǎn)移到GLP的環(huán)境中。
Gyrolab平臺
Gyrolab是一個非96微孔板的免疫測試平臺，具有液體處理功能（liquid handling capability），使用小體積的樣本和試劑在光盤（CD）上實施免疫測定。該測試格式使用biotinylated捕獲試劑和標記有fluorophore的檢測試劑，在納升體積的使用親和力微珠填料的捕獲柱（nanoliter volume affinity capture column）上進行測試。利用CD的微觀結(jié)構確定樣品和試劑的體積，并通過旋轉(zhuǎn)CD將樣本加到捕獲柱上。在每個CD上，有96（在1000nlCD上）-112（在20或200nl CD上）個微觀結(jié)構，可產(chǎn)生96-112個數(shù)據(jù)點（1小時/CD運行時間）。在Gyrolab工作站上，樣品處理完全自動化，液體處理臂將樣品和試劑從微孔板轉(zhuǎn)移到CD，并通過激光/檢測器測定每個捕獲柱的熒光信號。基礎的Gyrolab xPlore™ 允許無人值守地一次分析1張CD，而Gyrolab xPand™允許分析多達5張CD（即480-560個數(shù)據(jù)點）。在大多數(shù)情況下，動態(tài)范圍為3-4個數(shù)量級。該平臺的靈敏度可與MSD的ECL平臺（低-中pg/ml）相媲美。
Gyrolab是一個自動化的微流體系統(tǒng)（microfluidic system），且其離心操作能夠高效地處理微量體積，因此大多數(shù)重復(duplicate）分析只需要小于5ml的樣本體積，就可以從同一微孔板重新分析未使用的樣品。該平臺使用包被了捕獲抗體的微珠來捕獲待測物，與下面討論的Luminex和Simoa平臺在捕獲待測物的原理上，即在更大的固相表面積上有更多的捕獲抗體（與ELISA相比），似乎有異曲同工之妙，總體效果是提升了捕獲待測物的效率，提升了靈敏度。Gyrolab的一個出色特點是，可以選擇不同的CD來調(diào)整定量的動態(tài)范圍，以滿足對低或高濃度樣本的分析。該分析技術平臺對于大分子的常規(guī)臨床前PK/PD分析無疑是非常有效的。此平臺在縮短檢測時間方面非常有效，無需人工移液和參與分析的每一步驟。這使得該平臺對開發(fā)方法和分析樣本都極具吸引力。此外，該平臺還提供實驗室信息管理系統(tǒng)集成和FDA 21 CFR part 11合規(guī)性，能夠?qū)⒎治龇椒ㄝp松地轉(zhuǎn)移到GLP環(huán)境中去。
Gyros的一個可能缺點是，如果以基于微孔板格式開發(fā)了分析方法檢測，則相同的試劑在轉(zhuǎn)移到Gyros時可能會性能欠佳，并且可能需要顯著地優(yōu)化才能獲得最佳性能。這是因為Gyros的孵育時間極短，需要高結(jié)合效率的捕獲試劑，而基于微孔板的檢測則不需要這種試劑，因為較長的孵育時間抵消了該需求。因此，如果使用Gyros，則需要在同一平臺對試劑進行篩選，然后測試其分析性能，并開發(fā)完整的分析方法。
BIAcore平臺
基于BIAcore平臺的藥物分析，依賴于待測物與固定在傳感器芯片（sensor chip surface）表面的待測物特異的試劑的相互作用。BIAcore實時監(jiān)測該結(jié)合相互作用，并讀出以相對響應單元（relative response units，RU）為單位的響應，該響應與Surface Plasmon Resonance（SPR）角度的變化相關，并且由傳感器芯片表面的液體薄膜的折射率變化所決定。折射率的變化與芯片表面結(jié)合的質(zhì)量成正比。這種實時的無標記技術與典型的免疫測定法有很大的不同，免疫測定法需要多個孵育和洗滌步驟，以及用于信號讀出的標記檢測抗體（labeled detection antibody）。對于臨床前藥物分析，可以將抗藥物特異性抗體固定在芯片表面實施通用化檢測，當樣本流經(jīng)分析隔室（cell）時，該抗體將結(jié)合樣本中所含有的mAb藥物。其它方式，如在芯片上固定待測物，也可用于特定的定量分析。對于此平臺，在驗證期間必須經(jīng)過10個周期的殘留（carry-over）測試，并且還應確定最大信號值（相對于背景值）的信號噪聲比（signal-to-noise ratio），以評估樣本分析期間的方法運行性能。此外，還必須評估在執(zhí)行大批量樣本分析的較長時期內(nèi)的芯片穩(wěn)定性（分析方法是特定于所使用的芯片類型）。由于該平臺通常運行一夜或更長時間，故樣本和試劑的穩(wěn)定性必須比典型的免疫測試方法具有更長的短期穩(wěn)定性（超過24小時），而且在Biacore T200上，樣本的總通量（overall sample throughput）較低。此外，單個分析運行需要包含校準曲線后和運行序列中間隔的QC樣本。通常，這對應于一個微孔板的校準品（calibration standards，Cs）和樣本。
可以對BIAcore實施IQ/OQ/PQ驗證，以滿足符合21 CFR Part 11的要求。使BIAcore儀器達到GLP合規(guī)的狀態(tài)不是一個簡單的過程，需要投入大量時間來處理數(shù)據(jù)傳輸（data transfer）和合適的校準（隨時間推移的）等問題。
該測試平臺更多地用于LBA關鍵試劑的篩選和表征。LBA關鍵試劑一般定義為：對待測物（analyte）特異性的LBA分析試劑，如抗體、多肽、蛋白質(zhì)、耦合物（標記），作為試劑的藥物和ADA試劑（陽性和陰性對照品）。
多通道（multiplexing）分析技術
Multiplexing測試方法可以節(jié)省時間和寶貴的樣品。但是，存在一個局限：即它們經(jīng)過嚴格優(yōu)化，只能在指定范圍和基質(zhì)中使用。不同的待測物對不同的基質(zhì)和稀釋的反應不同，因此，對于某個待測物，優(yōu)化參數(shù)的偏差可能需要重新優(yōu)化整個multiplexing檢測方法。在臨床前生物分析中，需要探索了解多種藥物、多個藥物變異體、多種藥物的組合和多種生物標志物。因此，檢測的靈活性是非常關鍵的，對此multiplexing可能幫助意義不是很大。
在樣本體積十分有限的特殊情況下，可以探索multiplexing。允許自主開發(fā)multiplexing方法的平臺包括：Luminex的xMAP技術，使用獨特的dyed beads，并取決于所使用的儀器（MAGPIX、LUMINEX 200或FLEXMAP 3D），可以分析50-500待測物；Quanterix SR-X，使用6個獨特的磁珠，可以multiplexing多達6個待測物；Quanterix SP-X可以multiplexing到10個待測物，使用其基于平面陣列的空間分離的化學發(fā)光成像技術。其中，MSD允許從黃金標準的singleplex平臺直接轉(zhuǎn)換到U-PLEX平臺進行檢測；Quanterix的SR-X和SP-X平臺在multiplexing時能夠提供超高靈敏度。
Luminex平臺
常用的Luminex®100/200™系統(tǒng)是基于流式細胞學（flow cytometry）原理的靈活程度很高的分析儀。該系統(tǒng)使用很小的樣本體積，在單個微孔板的孔/井中multiplex（同時測定）多達100個待測物。該平臺可以操作許多檢測格式，包括核酸測試方法（nucleic acid assays）、受體-配體測試方法（receptor-ligand assays）、免疫測試方法（immunoassays）和酶測試方法（enzymatic assays），并提供快速且經(jīng)濟高效的生物測試結(jié)果。
該系統(tǒng)是xMAP® 3個核心檢測技術的組合。第1個是xMAP微球，這是一個熒光染色，微米大小的聚苯乙烯微球系列，既作為標識符，又充當建立測試方法的固體表面。第2個是基于流式細胞學的儀器（flow cytometry-based instrument），Luminex 100/200分析儀集成了關鍵的xMAP檢測組件，如激光、光學器件、流體技術和高速數(shù)字信號處理器。第3個組件是xPONENT®軟件，它專門設計為基于方案（protocol-based）的數(shù)據(jù)采集方式，具有強大的數(shù)據(jù)回歸分析的能力。
Luminex利用特定染料的珠子（beads），該珠子包被有特定的抗待測物抗體。添加待測物孵育后，再添加熒光標記的抗體，以檢測和定量待測物。此項技術使用供應商預先生產(chǎn)的試劑盒，主要用于PD檢測，即生物標志物的定量分析，并且采用多通路檢測（multiplexing）的方式。商業(yè)化的試劑盒數(shù)量巨大，據(jù)稱達1,300余種。一個樣本可以用于測定多個待測物，據(jù)稱最多可達500個，并且可以對每種待測物設置接受標準。不足之處是：不同待測物珠子（analyte beads）有交互干擾（cross-talk）的傾向，而且測試方法對光敏感，因此必須采取特殊的預防措施。
超高靈敏的定量分析技術
對于某些藥物和樣本基質(zhì)，可能需要具有fg/ml-低pg/ml的超高靈敏度的定量分析方法。相關狀況包括定量低豐度的生物標志物，對強效藥物分子的PK分析和定量極易受到基質(zhì)效應影響的待測物，顯然，大幅度稀釋樣本會提升對測定平臺靈敏度和定量動態(tài)范圍的要求。
目前，允許自主開發(fā)方法的超高靈敏度的定量分析平臺包括來自Quanterix，基于Simoa™的數(shù)字化ELISA，來自Singulex的使用單分子計數(shù)（single molecule counting）的Erenna™，以及來自Chimera Biotec GmbH的基于免疫PCR（immuno-PCR）的Imperacer。
之前已經(jīng)發(fā)表的文章詳細評估了這3種超高靈敏度的分析技術，以及其它不太流行的分析技術。這3種技術都是需要供應商提供檢測方法的分析儀器，但都允許用戶自主開發(fā)檢測方法。當擁有實時定量PCR（qPCR）儀器（thermal cycler fitted with a fluorimeter）時，還可以獨立于供應商提供的試劑或儀器開發(fā)Immuno-PCR方法。在使用這些技術時，需要特別注意一些非常規(guī)情況，包括Simoa™ 的磁珠偶合，DNA與檢測試劑的偶合，以及無污染地操作immuno-PCR。
基于單分子陣列（Simoa™）的數(shù)字化ELISA
來自Quanterix公司的Simoa™數(shù)字化ELISA是一個很有前途的平臺，它可以使蛋白質(zhì)定量達到fg/ml。該技術采用基于微觀順磁珠（microscopic paramagnetic bead）的免疫測試方法，并結(jié)合獨特的信號檢測和數(shù)據(jù)采集系統(tǒng)。數(shù)字化ELISA分2個階段實施。在捕獲抗原的第1階段，涂有捕獲試劑的微觀磁珠與樣品混合，然后加入生物素標記的檢測抗體（biotinlabeled detection antibody）和鏈球菌素-β-半乳糖酶（streptavidin–b-galactosidase）。然后，這些珠子被加載到光盤上，光盤上裝有一系列體積為飛升（femtoliter）大小的微井陣列。每個微井的直徑為4.5mm，能夠容納直徑為2.7mm的珠子數(shù)目只能為1或者為0。被硅膠墊片密封的微井含有熒光底物，其用于信號生成和放大（圖2）。Simoa™ 技術在定量分析的第二階段采用了獨特的信號檢測系統(tǒng)。微井（50飛升）中濃度相對較高的發(fā)出熒光的產(chǎn)物（陽性事件）和白光散射（white light scattering）測定的總珠子負載可以由標準的CCD攝像機輕松地檢測到和記錄。通過改進幾個檢測步驟，Simoa™ 實現(xiàn)了超高靈敏度。
圖2. 在飛升體積（femtoliter）的井陣列中裝載，密封和成像單個順磁珠
因為在100mL的反應體積中有約200,000個磁珠，而每個磁珠捕獲約80,000個抗體分子，抗體-待測蛋白的比值和平衡允許高效地在給定的示例中，>70%捕獲待測物。由于溶液中有這么多的磁珠，而且可以在溶液中運動，所以捕獲效率進一步提高，因為每個目標蛋白在不到1分鐘時間內(nèi)就會遇到磁珠。這與傳統(tǒng)的LBA方法中，固定在一個表面的捕獲抗體與待測物的緩慢結(jié)合完全相反。另外，優(yōu)化了的biotin-labeled detection antibody與streptavidin–b-galactosidase之間的比值，可減少檢測背景并最大化特定信號的采集。與Simoa™檢測系統(tǒng)相結(jié)合，相關熒光信號可以通過熒光底物（fluorogenic substrate）的酶消化（enzymatic digestion），而進一步放大。
Simoa™ 檢測系統(tǒng)能夠檢測到單個結(jié)合事件（a single binding event），該事件可以在低濃度下以數(shù)字方式獲得（靈敏度增高，數(shù)字化ELISA），或在高濃度模式下以模擬的方式獲得（擴展了的定量動態(tài)范圍）。熒光用于檢測酶活性，并能夠測定每個磁珠上酶的平均值。與下面描述的Erenna®平臺一樣，結(jié)合數(shù)字式和模擬式的讀數(shù)功能，可以實現(xiàn)非常寬廣的定量動態(tài)范圍。由于最終信號采集是在平面陣列上完成標準成像，因此與使用 Erenna®等流體系統(tǒng)的數(shù)值讀出相比，數(shù)據(jù)采集更快。
盡管Erenna® 和Simoa™ 平臺具有數(shù)字讀出和寬廣的定量動態(tài)范圍等共同點，但Simoa™ 平臺是一個完全自動化的系統(tǒng)，該儀器可以實施樣品稀釋（高達1:10稀釋），混合，洗滌，孵化和數(shù)據(jù)采集步驟。Simoa™ 能夠同時測定多達10種不同的待測物（multiplexing）。這是通過對單個捕獲抗體使用不同的dye linkers來實現(xiàn)的。之后，對陣列進行多個波長的熒光成像，以識別擁有不同dye linkers的亞組，并確定是否存在enzyme reporter標記。與Singulex和Quanterix一樣，有許多試劑盒可供選擇。也可以“定制”開發(fā)，或“自主開發(fā)”分析方法。
憑借較高的靈敏度、multiplexing和自動化功能，該平臺看起來非常理想。Simoa™平臺與LIMS系統(tǒng)兼容，其軟件滿足監(jiān)管級別的生物分析據(jù)FDA 21 CFR part 11的合規(guī)性要求。筆者認為該平臺因其超高靈敏度（可以使用微量樣本體積）和自動化操作，在相當?shù)某潭壬峡梢蕴娲鶪yrolab平臺，用于臨床前PK樣本分析。
Singulex Erenna®平臺
Erenna®免疫測試系統(tǒng)利用兩步的過程實現(xiàn)超高靈敏度定量分析（ultrasensitive assays）。最初，使用biotinylated capture試劑和熒光標記檢測試劑，在96孔板中實施基于珠子（beads）的夾心式測試格式。從珠子上洗脫的被捕獲待測物被轉(zhuǎn)移到一個384孔的讀取板（reading plate），然后將該讀取板放置到檢測儀器上。然后樣本一個接一個地通過毛細管進入flow cell，并在其中實施激光誘導的單分子檢測分析。該平臺的優(yōu)勢是寬廣的定量動態(tài)范圍，其通過獨特的軟件曲線擬合算法實現(xiàn)。該算法利用了多次讀數(shù)，提升了靈敏度。
與其它測試平臺相比，檢測時間較長，但一些線下的自動化設備可用于洗滌和轉(zhuǎn)移步驟。該平臺通常用于PD檢測，但也可用于PK定量分析。對供應商生產(chǎn)和供應的試劑盒，其穩(wěn)定性必須由最終用戶評估，因為試劑的穩(wěn)定性通常是未知的。此外，可以購買通用試劑，以開發(fā)內(nèi)部的檢測試劑，而且，基于微孔板的格式也能兼容使用96或384孔板的平臺。供應商建議對校準品（Cs）進行3次復測（triplicate），以便在低濃度下進行精確分析?？梢酝ㄟ^IQ/OQ程序，與內(nèi)部PQ相結(jié)合，驗證Erenna®平臺。如果將Erenna®與LIMS結(jié)合，以實施監(jiān)管級生物分析，則一個選擇是使用讀出的三個信號之一進行濃度分析。但是，動態(tài)范圍和靈敏度可能會受到影響，具體取決于選擇哪個讀出的信號。
Immuno-PCR (Polymerase Chain Reaction)
Immuno-PCR（Chimera）是一種擴增免疫測試技術（signal amplification immunoassay）。它涉及DNA標記的檢測抗體的擴增，從而提高靈敏度。與ELISA中使用的抗體-酶偶合物（antibody–enzyme conjugates）不同，IPCR中的關鍵試劑是抗體-DNA偶合物（antibody–DNA conjugates），其中一個DNA標記（marker）與檢測抗體相偶合。然后，將DNA polymerase加入到反應主混合物之中，就可以放大檢測信號，并通過定量PCR（qPCR）而定量測定DNA-marker的濃度，從而定量分析analyte–antibody immunocomplex。因此，該技術主要改進了檢測信號的放大方法。但是，如果檢測抗體與血清或血漿中的成分發(fā)生交叉反應，該平臺可能容易受到強大基質(zhì)效應的影響。因此，在方法驗證期間必須評估信噪比，并用于確定樣本分析期間方法的性能。
該平臺的優(yōu)點包括寬廣的定量動態(tài)范圍和提升了的靈敏度，這對PD分析是很有益的。與 Erenna®平臺一樣，檢測試劑高度依賴于供應商，對于大批量樣本分析來說，成本可能很高。如同MSD、Erenna®和其它基于珠子的平臺一樣，應特別注意標記試劑和微孔板批次的變化。由于該平臺依賴于PCR技術，因此在處理樣本、試劑和移液器槍頭時必須小心謹慎，以避免污染。此外，數(shù)據(jù)分析可能也會較為麻煩（cumbersome）。
7. 特別聲明
本文如有疏漏和誤讀相關指南和數(shù)據(jù)的地方，請讀者評論和指正。所有引用的原始信息和資料均來自已經(jīng)發(fā)表學術期刊, 官方網(wǎng)絡報道等公開渠道, 不涉及任何保密信息。 參考文獻的選擇考慮到多樣化但也不可能完備。歡迎讀者提供有價值的文獻及其評估。
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